Клинический разбор в общей медицине

Clinical review for general practice
ISSN (Print) 2713-2552
ISSN (Online) 2782-5671
  • Главная
  • О журнале
  • Архив
  • Контакты
Левый блок
Полноэкранный режим > Архив > 2026 > Микробиологическое исследование тканевых биоптатов у пациентов с боевыми ранами конечностей

Микробиологическое исследование тканевых биоптатов у пациентов с боевыми ранами конечностей

Для цитирования:


  • Аннотация
  • Об авторе
  • Список литературы

Аннотация

Цель. Оценить количество и структуру бактериальных возбудителей раневой инфекции в биоптатах ран у пациентов с боевыми ранами конечностей. 
Материалы и методы. В исследование включены 86 пациентов, перенесших ранение конечностей в сроки от 4 до 121 дня до поступления в стационар. Во время пребывания в стационаре регулярно проводилось микробиологическое исследование (МБИ) тканей ран с посевом на питательные среды и идентификацией микроорганизмов в соответствии со стандартными методами и процедурами. Перед проведением МБИ биоптаты тканей ран гомогенизировались и взвешивались. 
Результаты. По результатам культурального исследования тканей ран рост микроорганизмов обнаружен у 79,1% пациентов. При первом МБИ наиболее часто выявлялся Acinetobacter baumannii (у 24,4% раненых). Инфицирование ран Pseudomonas aeruginosa зарегистрировано в 22,1% случаев, Enterococcus faecalis – в 19,8%, Klebsiella pneumoniae – в 10,5%, Escheriсhia coli – в 5,8%, Enterobacter cloacae – в 5,8%, Staphylococcus aureus – в 7%. У 64,7% пациентов при культуральном исследовании обнаруживался один микроорганизм, у 26,5% – два, у 8,8% – три. Наиболее часто отмечалась ко-инфекция P. aeruginosa и K. pneumoniae (у 5 пациентов). 28,6% штаммов A. baumannii были резистентными ко всем тестированным антибактериальным препаратам, 19% – экстремально резистентными, 19% – полирезистентными. 66,7% изолятов K. pneumoniae были резистентными ко всем тестированным антибактериальным препаратам, 33,3% – экстремально резистентными; 52,6% штаммов P. aeruginosa были экстремально резистентными, 47,4% – полирезистентными; 80,2% пациентов для лечения инфицированных ран назначалась антибактериальная терапия, у 19,8% антибактериальная терапия не проводилась. Наиболее часто применяемыми антибактериальными препаратами были цефепим (у 37,2% пациентов), амикацин (у 31,4%), цефазолин (у 30,2%), сульбактам (у 27,9%), ванкомицин (у 12,8%) и имипенем/циластатин (у 11,6%). Пациентам также проводились вторичные хирургические обработки ран, применялись мазевые повязки. У 56 пациентов применялась вакуум-ассистированная терапия ран. У 37 пациентов в ходе госпитализации были произведены реампутации конечностей. За время стационарного лечения лишь у 18,6% пациентов сохранялась одна и та же микрофлора в тканях ран, у оставшихся раненых в серии последующих МБИ была зарегистрирована суперинфекция. Чаще всего наблюдалось присоединение E. faecalis (у 11 пациентов), S. aureus (MRSA или MSSA) (у 8 пациентов), A. baumannii (у 6 пациентов) и P. aeruginosa (у 5 пациентов). У 14 пациентов при последнем МБИ роста микроорганизмов в биоптатах ран не обнаружено.
Выводы. Результаты исследования свидетельствуют о высокой частоте инфицирования боевых ран грамотрицательными микроорганизмами на госпитальном этапе оказания медицинской помощи. Наиболее часто среди бактериальных возбудителей выявлялись 
A. baumannii и P. aeruginosa. Среди энтеробактерий и A. baumannii превалировали резистентные штаммы, что необходимо учитывать при назначении антимикробной терапии. 
Ключевые слова: боевые раны, тканевые биоптаты, инфицирование, резистентность, антибактериальные препараты.

Об авторе

С.В. Тополянская1,2, Л.И. Бубман1, Т.В. Усова1, А.Д. Казанцев1,2, М.А. Гладких1, А.М. Эмомадов1, И.М. Буриев1, Г.Г. Мелконян1,3

1 ГБУЗ «Госпиталь для ветеранов войн №3» Департамента здравоохранения г. Москвы, Москва, Россия;
2 ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия;
3 ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России, Москва, Россия

sshekshina@yandex.ru

Список литературы

1. Sahli ZT, Bizri AR, Abu-Sittah GS. Microbiology and risk factors associated with war-related wound infections in the Middle East. Epidemiol Infect 2016;144:2828-285. DOI: 10.1017/S0950268816000431
2. Avila-Herrera A, Thissen JB, Mulakken N et al. Metagenomic features of bioburden serve as outcome indicators in combat extremity wounds. Sci Rep 2022;12(1):13816. DOI: 10.1038/s41598-022-16170-x 
3. Be NA, Allen JE, Brown TS et al. Microbial profiling of combat wound infection through detection microarray and next-generation sequencing. J Clin Microbiol 2014; 52(7):2583-94. DOI: 10.1128/JCM.00556-14 
4. Kok CR, Mulakken N, Thissen JB et al. Targeted metagenomic assessment reflects critical colonization in battlefield injuries. Microbiol Spectr 2023;11(6):e0252023. DOI: 10.1128/spectrum.02520-23 
5. Ksenchyna K, Dmytriiev D, Volanskyi K et al. Early post-trauma wound microbiota and its association with pain outcomes and mental health in combat-related extremity injuries: a prospective analysis. Front Pain Res (Lausanne) 2025;6:1564994. DOI: 10.3389/fpain.2025.1564994
6. Gordon W, Kuhn K, Staeheli G, Dromsky D. Challenges in definitive fracture management of blast injuries. Curr Rev Musculoskelet Med 2015; 8(3):290-7. DOI: 10.1007/s12178-015-9286-7
7. Stewart L, Shaikh F, Bradley W et al. Combat-Related Extremity Wounds: Injury Factors Predicting Early Onset Infections. Mil Med 2019;184(Suppl. 1):83-91. DOI: 10.1093/milmed/usy336
8. Chen Y, Chau J, Yoon J, Hladky J. Rapid, label-free pathogen identification system for multidrug-resistant bacterial wound infection detection on military members in the battlefield. PLoS One 2022;17(5):e0267945. DOI: 10.1371/journal.pone.0267945
9. Schobel SA, Gann ER, Unselt D et al. The influence of microbial colonization on inflammatory versus pro-healing trajectories in combat extremity wounds. Sci Rep 2024;14(1):5006. DOI: 10.1038/s41598-024-52479-5
10. Brown TS, Hawksworth JS, Sheppard FR et al. Inflammatory response is associated with critical colonization in combat wounds. Surg Infect 2011;12(5):351-7. DOI: 10.1089/sur.2010.110
11. Tintle SM, Shawen SB, Forsberg JA et al. Reoperation after combat-related major lower extremity amputations. J Orthop Trauma 2014;28(4):232-7. DOI: 10.1097/BOT.0b013e3182a53130
12. Bieler D, Kollig E, Weber W et al. Microbiological challenges in the treatment of war injuries. Unfallchirurgie (Heidelb) 2024;127(7):509-14. DOI: 10.1007/s00113-024-01444-y 
13. Davis KA, Moran KA, McAllister CK, Gray PJ. Multidrug-resistant Acinetobacter extremity infections in soldiers. Emerg Infect Dis 2005;11(8):1218-24. DOI: 10.3201/1108.050103 
14. Calhoun JH, Murray CK, Manring MM. Multidrug-resistant organisms in military wounds from Iraq and Afghanistan. Clin Orthop Relat Res 2008;466(6):1356-62. DOI: 10.1007/s11999-008-0212-9
15. Hannigan GD, Hodkinson BP, McGinnis K et al. Culture-independent pilot study of microbiota colonizing open fractures and association with severity, mechanism, location, and complication from presentation to early outpatient follow-up. J Orthop Res 2014;32(4):597-605. DOI: 10.1002/jor.22578 
16. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Российские рекомендации МАКМАХ. Версия 2024-02. Год утверждения (частота пересмотра): 2024 (пересмотр ежегодно). Смоленск, 2024. 
Determination of the sensitivity of microorganisms to antimicrobial drugs. Russian recommendations IACMAC. Version 2024-02. Year of approval (frequency of revision): 2024 (annual revision). Smolensk, 2024 (in Russian).
17. Magiorakos A-P, Srinivasan A, Carey RB et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin Microbiol Infect 2012;18:268-81. DOI: 10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x
18. Velasco JM, Valderama MT, Margulieux K et al. Comparison of Carbapenem-Resistant Microbial Pathogens in Combat and Non-combat Wounds of Military and Civilian Patients Seen at a Tertiary Military Hospital, Philippines (2013-2017). Mil Med 2020;185(1-2):e197-e202. DOI: 10.1093/milmed/usz148
19. Davies CE, Hill KE, Wilson MJ et al. Use of 16S ribosomal DNA PCR and denaturing gradient gel electrophoresis for analysis of the microfloras of healing and nonhealing chronic venous leg ulcers. J Clin Microbiol 2004;42(8):3549-57. DOI: 10.1128/JCM.42.8.3549-3557.2004
20. Mende K, Akers KS, Tyner SD et al. Multidrug-Resistant and Virulent Organisms Trauma Infections: Trauma Infectious Disease Outcomes Study Initiative. Mil Med 2022;187(Suppl. 2):42-51. DOI: 10.1093/milmed/usab131

Для цитирования:Тополянская С.В., Бубман Л.И., Усова Т.В., Казанцев А.Д., Гладких М.А., Эмомадов А.М., Буриев И.М., Мелконян Г.Г. Микробиологическое исследование тканевых биоптатов у пациентов с боевыми ранами конечностей. Клинический разбор в общей медицине. 2026; 7 (6): 150–154. DOI: 10.47407/kr2026.7.6.00877


Журнал предоставляет свободный доступ с возможностью использовать статьи в некоммерческих целях при условии указания авторства в рамках лицензии CC BY-NC-SA 4.0 (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/deed.ru)

  • О журнале
  • Редколегия
  • Редакционная этика
  • Авторам
  • Плата за публикацию
  • Порядок рецензирования
  • Контакты
   

oa
crossref
анри


  Индексация

Scopus
doaj
elibrary_rus.png

Почтовый адрес издателя

127055, Москва, а/я 37

Адрес редакции

115054, Москва, Жуков пр-д, 19, эт. 2, пом. XI


По вопросам публикаций

+7 (495) 926-29-83

id@con-med.ru